DSPE-PEG2000-SH 修饰脂质体的制备步骤
1. 材料准备
核心组分:
主磷脂:HSPC、DSPC 或 DMPC(调节膜流动性);
胆固醇:优化膜稳定性和包封效率(一般占总脂质的 20–30 mol%);
DSPE-PEG2000-SH:提供 PEG 亲水层和巯基修饰位点(占总脂质的 3–5 mol%);
溶剂与仪器:
有机溶剂:氯仿/甲醇(体积比 2:1)溶解脂质;
水相:PBS 缓冲液或去离子水;
设备:旋转蒸发仪、超声仪、挤出装置(聚碳酸酯膜)。
2. 脂质混合与成膜
配方设计:
典型摩尔比:HSPC:胆固醇 = 65:30:5;
根据负载药物性质(如疏水性或亲水性)调整比例。
溶解与混合:
将所有脂质溶于氯仿/甲醇混合溶剂,室温超声 10 分钟至完全溶解;
旋转蒸发成膜:
将混合液转移至圆底烧瓶,40°C 旋转蒸发去除溶剂,形成均匀脂质薄膜;
真空干燥 1–2 小时彻底去除残留溶剂。
3. 水化与粒径控制
水化:
加入预热的 PBS 缓冲液(或含药物的水相),40°C 振荡 30 分钟使脂质膜充分水化;
初步形成多室脂质体(MLVs)。
超声或挤出均质化:
超声法:探头超声处理(间歇模式,避免过热)至悬液半透明;
挤出法(更优):依次通过 400 nm、200 nm、100 nm 聚碳酸酯膜,循环挤出 5–10 次,获得单室小脂质体(SUVs)。
4. 纯化与后处理
去除未包封物质:
超滤法:使用截留分子量 100 kDa 的超滤管离心去除游离药物或杂质;
透析法:在 PBS 缓冲液中透析 12–24 小时;
灭菌与保存:
过 0.22 μm 滤膜灭菌,4°C 短期保存或冻干长期储存。
5. 质量评价
粒径与分散性:动态光散射(DLS)检测平均粒径(通常 80–150 nm)和 PDI(<0.2 为佳);
包封率:超滤-高效液相色谱(HPLC)法测定药物包封率;
稳定性:4°C 或 37°C 下监测粒径变化,评估储存稳定性。
关键注意事项
巯基保护:制备过程中加入 1–5 mM EDTA 或 DTT,防止巯基氧化;
批次一致性:严格控制脂质比例、挤出压力和温度,确保粒径均一性;
靶向修饰(可选):通过 DSPE-PEG2000-SH 的巯基偶联靶向配体(如抗体或肽段),需在脂质体纯化后进行。
制备流程总结
配方设计 → 脂质溶解 → 薄膜形成 → 水化 → 粒径控制 → 纯化 → 质量评价
关于我们 :
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